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Registro vivo · Trabajo de campo

La ciencia con las manos

No describimos una rana desde un escritorio. Nuestra ciencia empieza de noche, en la quebrada: caminamos, observamos, medimos y devolvemos cada animal a su sitio. Esto es lo que hacemos cuando el bosque despierta.

Registro
REG. № 2017-601 · Campo
Años de campo
20+ recorriendo bosques de Panamá
Zona de muestreo
Chiriquí

El bosque, de noche

Tres tomas de una misma jornada: el grupo en el transecto, la libreta a la luz de la frontal y el examen de un ejemplar antes de soltarlo.

22:41 · ISO 3200 · Chiriquí, Panamá
Protocolo de campo

Cinco pasos, una misma disciplina

Cada noche de campo sigue el mismo método. Toca un paso para ver cómo se hace y por qué importa.

5 pasos · método de campo
  1. P-01

    Recorrido nocturno

    Herping con linterna frontal

    Caminamos la quebrada de noche, cuando el bosque despierta y las ranas cantan.

    Ver el método
  2. P-02

    Captura y registro

    Medición, sexado y datos en libreta

    Cada animal se identifica, se mide y se fotografía con sus datos de lugar y hora.

    Ver el método
  3. P-03

    Muestreo e hisopado

    Tamizaje del hongo quítrido (Bd)

    Tomamos una muestra de piel para medir el hongo quítrido (Bd).

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  4. P-04

    Bioacústica

    Grabación e identificación de cantos

    Grabamos los cantos: cada especie tiene una firma sonora propia.

    Ver el método
  5. P-05

    Registro fotográfico y liberación

    Foto testigo y devolución al sitio exacto

    Documentamos y devolvemos cada animal exactamente a su sitio.

    Ver el método

El protocolo se adapta al sitio, la especie y el permiso de colecta vigente. Horas, timecodes y cifras de este registro son del cuaderno de campo y se confirman con la base de datos de la fundación.

P-01 · 20:30 h · inicio del transecto

Recorrido nocturno

Herping con linterna frontal

El recorrido sigue transectos fijos a lo largo de quebradas y bordes de bosque. Avanzamos despacio, en silencio, barriendo con la linterna frontal la vegetación a la altura de la vista y el suelo de hojarasca.

De noche el bosque trabaja a nuestro favor: muchas especies cantan, se desplazan y exhiben el brillo de los ojos (eyeshine) bajo la luz frontal. Ese reflejo, junto al canto, es lo que guía el avance.

Cada encuentro se ubica antes de tocar nada: posición en el transecto, hora, altura sobre el suelo y planta o sustrato donde estaba el animal. El sitio se registra primero; la captura, después.

Horario
20:00 – 02:00 h
Equipo
Linterna frontal · GPS · libreta
Registra
Sitio · hora · sustrato
P-02 · 21:15 h · primer ejemplar

Captura y registro

Medición, sexado y datos en libreta

La captura es siempre con manos limpias y guantes de un solo uso, cambiados entre individuos para no transportar patógenos de una rana a otra. El animal pasa el menor tiempo posible fuera de su microhábitat.

En la libreta queda el examen completo: longitud hocico-cloaca, peso, sexo cuando es determinable, coloración, estado reproductivo y cualquier marca o anomalía. Cada ejemplar recibe un número de registro de campo.

Si el dato no se anota en el momento, se pierde. La libreta —no la memoria— es la base científica: de ahí salen las series que, año tras año, muestran si una población crece, se estabiliza o desaparece.

Mide
LHC · peso · sexo · estado
Higiene
Guante nuevo por individuo
Salida
Número de registro de campo
P-03 · 21:40 h · hisopado piel

Muestreo e hisopado

Tamizaje del hongo quítrido (Bd)

El quítrido —Batrachochytrium dendrobatidis, o Bd— es el hongo responsable del colapso de los anfibios en Centroamérica. Saber dónde está y a quién infecta es clave para entender qué poblaciones siguen en riesgo.

Con un hisopo estéril se recorre un número fijo de pasadas por el vientre, los muslos y las plantas de los pies, la zona donde el hongo se concentra. El hisopo se guarda etiquetado, en seco o en alcohol, según el protocolo del laboratorio.

La muestra se analiza después por qPCR para confirmar presencia y carga de Bd. Combinado con el registro de cada individuo, el tamizaje dibuja el mapa de la enfermedad: dónde golpea, en qué especies y cómo cambia con la altura y la temporada.

Busca
Hongo quítrido (Bd)
Método
Hisopo estéril · zonas fijas
Análisis
qPCR en laboratorio
P-04 · 22:05 h · grabación de canto

Bioacústica

Grabación e identificación de cantos

Muchas ranas se delatan por el oído antes que por la vista. Con grabadora direccional y registradores autónomos capturamos el coro de la quebrada: la hora, la temperatura y la humedad quedan anotadas junto a cada toma.

El canto es una huella. En el sonograma, cada especie tiene su patrón de frecuencia y ritmo; de ahí identificamos quién está presente, estimamos cuántos machos cantan y detectamos especies difíciles de ver o de capturar.

La bioacústica permite monitorear sin molestar: un registrador puede escuchar noche tras noche un sitio remoto. Comparando coros entre temporadas y entre años, se sigue el pulso de una población con un impacto mínimo sobre ella.

Captura
Grabadora · registrador autónomo
Lee
Sonograma · frecuencia · ritmo
Ventaja
Monitoreo sin contacto
P-05 · 22:30 h · liberación in situ

Registro fotográfico y liberación

Foto testigo y devolución al sitio exacto

Antes de soltar, se toma una foto testigo del ejemplar: dorso, vientre y cualquier rasgo de identificación. La imagen ata el animal vivo a su número de registro y, en muchos casos, permite reconocer al mismo individuo en visitas futuras.

La liberación es parte del método, no un trámite. El animal se devuelve al mismo punto del transecto donde se encontró, sobre el mismo tipo de sustrato y a una altura similar, para no alterar su microhábitat ni su comportamiento.

La regla es simple: lo que entra al registro es el dato, no el animal. Salvo colectas puntuales con permiso, cada rana examinada vuelve a su noche. El bosque queda como estaba; el conocimiento, un poco más completo.

Deja
Foto testigo · número de registro
Devuelve
Mismo punto · mismo sustrato
Principio
El dato se queda, la rana también